Les systèmes RCCS existent en plusieurs formats : systèmes batch ou perfusés, cuves réutilisables ou jetables, une ou plusieurs positions de culture, et différents volumes de cuves. Le choix dépend du type cellulaire, du volume, de la durée de culture, du nombre de conditions à tester et du besoin éventuel de perfusion. L’équipe CellD peut vous accompagner pour identifier la configuration la plus adaptée à votre protocole.

Oui. Les bioréacteurs RCCS sont conçus pour être placés dans un incubateur CO₂ humidifié standard. Les cuves utilisent une membrane en silicone permettant les échanges gazeux entre l’environnement de l’incubateur et le milieu de culture. L’humidification est importante pour limiter l’évaporation du milieu et éviter l’apparition de bulles.

L’oxygénation se fait par diffusion des gaz à travers la membrane en silicone de la cuve. Les paramètres de l’incubateur, notamment la température et la concentration en CO₂, déterminent les conditions dans la cuve. Pour certains systèmes de plus grand volume, une circulation d’air peut être utilisée afin d’améliorer l’exposition de la membrane au gaz, sans introduire de bulles dans le milieu.

Non. Les cellules, agrégats cellulaires, sphéroïdes ou microporteurs se déplacent continuellement dans le milieu pendant la rotation de la cuve. Ce mouvement dynamique favorise leur exposition aux nutriments et contribue à maintenir un environnement de culture homogène.

La vitesse de rotation dépend du modèle biologique, de la taille des cellules ou agrégats, du type de support utilisé et de l’évolution de la culture. Lorsque les agrégats augmentent en taille, leur vitesse de sédimentation peut évoluer. Il peut donc être nécessaire d’ajuster progressivement la vitesse de rotation afin de maintenir les structures en suspension et d’éviter leur contact avec la paroi de la cuve.

Oui. Les microporteurs peuvent être utilisés comme support pour les cellules adhérentes. Les cellules peuvent s’attacher aux microporteurs dans l’environnement dynamique et à faible cisaillement du RCCS.

Non. Les roller bottles permettent généralement une culture cellulaire sur paroi en 2D. Le RCCS permet de cultiver les cellules en suspension dynamique, sous forme de sphéroïdes 3D ou sur des supports tels que des microporteurs ou scaffolds.

Oui. La cuve doit être remplie sans espace d’air, car les bulles peuvent augmenter la turbulence et le stress mécanique sur les cellules. L’un des intérêts du RCCS est justement de maintenir un environnement doux et à faible cisaillement.

Le RCCS est la plateforme générale de culture cellulaire 3D dynamique. Le RCCS-SC reprend le même principe, mais dans une configuration dédiée aux cellules souches, avec de petits volumes adaptés aux cellules précieuses et aux facteurs de croissance coûteux.

Les cuves HARV sont adaptées aux petits volumes, aux sphéroïdes, organoïdes et modèles 3D sensibles. Les cuves STLV sont plutôt utilisées pour des volumes plus importants, des microporteurs, des scaffolds, des tissus ou des explants.

Les systèmes Single-Use sont recommandés lorsque le laboratoire souhaite éviter le nettoyage et l’autoclavage, gagner du temps, réduire les manipulations ou limiter les risques de contamination croisée.

RCCMax est adapté aux cultures longues ou plus exigeantes nécessitant une perfusion continue du milieu. Il peut être pertinent pour les organoïdes, explants, scaffolds, sphéroïdes ou modèles tissulaires complexes.

Oui. Les systèmes Synthecon peuvent être utilisés pour différents modèles 3D, notamment les sphéroïdes, organoïdes, explants, scaffolds, microporteurs et cellules souches. Le choix du système dépend du type cellulaire, du volume, de la durée de culture et du besoin éventuel de perfusion.

La culture 2D reste essentielle, mais elle ne reproduit pas toujours l’organisation tridimensionnelle, les gradients et les interactions observés dans les tissus. Les systèmes RCCS permettent de développer des modèles 3D dynamiques dans un environnement doux, avec faible cisaillement et transfert efficace des nutriments.